Cáncer de ovario
15 septiembre, 2016Oncológicas
Descripción de la patología
Representa el 3 % de las neoplasias en la mujer y es la sexta causa de cáncer en la mujer en España. La mayoría de los cánceres de ovario se diagnostican en estadios más avanzados (III y IV), cuando las oportunidades de controlar la enfermedad son menores; además, no existe método de screening eficaz que nos permita realizar un diagnóstico precoz.
Los síntomas suelen ser inespecíficos –comunes en procesos no malignos– y en muchas ocasiones aparecen en etapas más avanzadas de la enfermedad.
TRATAMIENTO CONVENCIONAL
El tratamiento quimioterápico adyuvante tras la resección quirúrgica no es necesario en las pacientes con tumores de bajo grado (I y II) estadio I, puesto que se estima que su supervivencia es del 95 % cuando se realiza cirugía reglada óptima. En estadios II, III y IV, así como todos aquellos de extirpe de células claras, las pautas de tratamiento mixtas de un platino (cisplatino o carboplatino) y paclitaxel constituyen el eje principal del tratamiento del cáncer de ovario. En resistentes al platino, lo más recomendable es participar en ensayos clínicos o bien utilizar otro agente quimioterápico en monoterapia o combinaciones con agentes antiangiogénicos.
Hay que tener en cuenta la toxicidad acumulativa a largo plazo experimentado por las pacientes después de la quimioterapia primaria y secundaria.
Protocolos
Protocolo de tratamiento
El protocolo de tratamiento es aquel que se lleva a cabo durante la fase aguda de la enfermedad. La complementación mediante extractos fúngicos es compatible con otros tratamientos oncológicos comunes como quimioterapia y radioterapia, pudiendo actuar como coadyuvante de estos sin generar interacciones.
Duración: está íntimamente ligado al pronóstico, al estadio, así como a otros tratamientos alopáticos a los cuales se vea sometido el paciente.
Para ajustar la dosis a las necesidades específicas de cada patología existen nuevas formulaciones que integran los compuestos bioactivos de los hongos, productos únicos que contienen altas concentraciones de extracto puro y polvo estandarizados de producción ecológica certificada.
De este modo se favorece de manera significativa la administración simultánea de varios extractos en una toma simple por parte del paciente, facilitando así su ingesta en aquellos que presentan limitaciones específicas y garantizando la completa administración del producto.
Nueva fórmula Mico-Mama: extracto ecológico de Ganoderma lucidum, Agaricus blazei, Grifola frondosa, Polyporus umbellatus y fruto de Myrciaria dubia.
Efectos secundarios comunes tratados con Mico-Mama:
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Náuseas
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Vómitos
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Alteraciones digestivas
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Astenia
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Riesgo de infecciones
Pautas para una correcta administración de las nuevas formulaciones
Dosis diaria recomendada (durante la primera semana): 1 vial + 1 cápsula / 24 h. Tomar en ayunas antes del desayuno o comida (o según prescripción médica).
Dosis diaria recomendada (segunda semana y posteriores): 1 vial + 1 cápsula / 12 h. Tomar en ayunas antes del desayuno y cena (o según prescripción médica).
Si ya está tomando los extractos de hongos:
Dosis diaria recomendada: 1 vial + 1 cápsula / 12 h. Tomar en ayunas antes del desayuno y cena (o según prescripción médica).
Modo de empleo:
- Abrir el vial por la zona marcada e ingerir. Agitar antes de usar.
- Extraer la cápsula del envase e ingerir con un poco de agua.
Extracto | Propiedad | Mañana | Tarde | Noche |
Mico-Mama | Adaptógeno Antiangiogénico Antimetastásico Inmunomodulador |
1 | 0 | 1/0 |
Protocolo de seguimiento y estabilización
El protocolo de seguimiento y estabilización es aquel que se lleva a cabo una vez finalizados los tratamientos con el objetivo de mantener una activación del sistema inmunitario.
Se recomienda la toma de Askorbato K-HdT (vitamina C, extracto de hoja de olivo y extracto de uva) cinco minutos antes de la toma de los extractos Micosalud para potenciar el efecto de los principios activos.
Posología: El número de cápsulas por producto abajo recomendado, oscilará entre 1 y 3 al día, dependiendo de las características físicas del paciente (edad, peso y altura) y la severidad de la patología, a discreción del prescriptor.
Extracto | Propiedad | Mañana | Tarde | Noche |
Askorbato K-HdT | Potenciador | 1 | 1 | 0 |
Mico-Rei | Adaptógeno Antiangiogénico Antitumoral |
1 | 1 | 0 |
Protocolo para el tratamiento de efectos secundarios
-
Alteraciones cutáneas
Los productos que se recomiendan están especialmente indicados para paliar los efectos producidos sobre la piel de los tratamientos de QT y RT.
Pautas generales para la aplicación de los sérums
Limpiar la piel en profundidad con Mico-Soap ONCO (Reishi, calendula & lemon). Aplicar directamente con agua o con la ayuda de un disco de algodón haciendo especial hincapié en el área afectada. Secar suavemente.
Aplicar Mico-QT Target en cantidad suficiente con un masaje suave sobre las zonas afectadas.
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Rash cutáneo: 3 veces al día (mínimo) durante 6 semanas.
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Xerosis: 3 veces al día (mínimo) durante el tratamiento y los 12 meses posteriores.
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Cambios ungueales: 3 veces al día (mínimo) durante el tratamiento y los 12 meses posteriores.
Aplicar Mico-RT en cantidad suficiente con un masaje suave sobre zonas afectadas.
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Pre-radioterapia: 3 veces al día durante 3 semanas antes de iniciar el tratamiento.
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En radioterapia: 3 veces al día durante el tratamiento de radioterapia. No aplicar el producto durante las 2 horas previas a la sesión.
-
Post-radioterapia: 2 veces al día (mínimo) en los 3 meses posteriores al tratamiento.
Extracto | Propiedad | Mañana | Tarde | Noche |
Mico-QT Target | 1 | 1 | 1 | |
Mico-QT Hand-Foot | 1 | 1 | 1 | |
Mico-RT | 1 | 1 | 1 | |
Mico-Soap Onco | 1 | 1 | 1 |
Protocolo para el tratamiento de efectos secundarios
- Ascitis
Extracto | Propiedad | Mañana | Tarde | Noche |
Askorbato K-HdT | Potenciador | 1 | 1 | 0 |
Mico-Polypor | Drenante | 1 | 1 | 0 |
Protocolo de mantenimiento
Extracto | Propiedad | Mañana | Tarde | Noche |
Askorbato K-HdT | 1 | |||
Mico-Corio PSK | 2/6 |
Se ha demostrado que el uso de los hongos como coadyuvante en el tratamiento de quimioterapia o radioterapia de primera línea no interfiere en la efectividad del tratamiento clínico protocolizado. Existen numerosos estudios que demuestran la compatibilidad de la Micoterapia con los tratamientos quimioterapéuticos como son el caso de taxol con extracto de Agaricus blazei o de Lentinus edodes [Ahn et al., 2004; Okuno y Uno, 2011], carboplatino y VP16 (etoposide) con extracto de A. blazei [Ahn et al., 2004], cisplatino con extracto de L. edodes y con lentinan, un beta-glucano obtenido de L. edodes [Hirose et al., 2007; Ina et al., 2011], placlitaxel con lentinan [Kubota et al., 2009], irinotecan, 5-fluorouracil y levofolinato con extracto de L. edodes [Okuno et al., 2011]. También se ha demostrado la eficacia de Ganoderma lucidum para reducir la nefrotoxicidad de ciertos quimioterápicos como el cisplatin [Kao et al., 2013 ].
Los hongos no solo presentan una falta de interacción medicamentosa con los tratamientos clínicos convencionales sino que además poseen una sinergia mejorando la actividad de los mismos y la adherencia al tratamiento del paciente que al ver mejorada su calidad de vida y reducirse los efectos secundarios permiten que se completen los ciclos de tratamiento hospitalario.
Disminución de los efectos secundarios de la quimioterapia utilizando G. frondosa [Mayell, 2001].
La absorción de los fármacos convencionales es a través de citocromos hepáticos que no coinciden con los citocromos que intervienen en la asimilación de los preparados fúngicos como el citocromo P450. Hifas da Terra posee extractos de hongos propios que han sido validados por diversos estudios científicos en cuanto a efectividad y a ausencia de interacción con los citocromos que involucran otros fármacos. Se ha demostrado que estos extractos presentan una posibilidad baja de interacción in vivo con otros medicamentos que se metabolizan a través del citocromo P450 [Fundación Medina].
Por lo tanto la Micoterapia es un tratamiento de inmunoterapia natural sin efectos secundarios que es fundamental para la recuperación del paciente tanto en primera línea de tratamiento como para evitar recidivas en prevención o en mantenimiento de largos supervivientes.
Los beneficios de la Micoterapia en el tratamiento contra el cáncer reside en la capacidad de las moléculas bioactivas de los hongos de actuar en distintos frentes [Patel et al., 2012]:
– Los extractos de hongos contribuyen a paliar los efectos secundarios producidos por los tratamientos convencionales como la quimioterapia o la radioterapia [Mayell, 2001; Ahn et al., 2004; Ohno et al., 2013].
– Los polisacáridos de los hongos han mostrado efecto inmunoestimulador de diferentes tipos celulares del sistema inmune del propio organismo, lo que potencia las defensas naturales contra el cáncer [Rajasekar et al., 2008]. Los hongos poseen capacidad para mantener un elevado nivel de linfocitos, esencial para detectar y contribuir a la eliminación de células metastásicas. Sus efectos sobre el aumento en linfocitos T o células NK se ha demostrado en diversos estudios, en coadyuvancia con la QT o RT [Mizuno et al., 1998, Kodama et al., 2002].
– Igualmente, el interés de la Micoterapia se extiende a la actividad citotóxica directa que presentan algunos extractos de hongos sobre diferentes tipos de células tumorales [Nguyen et al., 2015; Elbatrawy et al., 2015]. Diversos triterpenos han mostrado efecto citotóxico frente a líneas celulares cancerígenas [Gao et al., 2002] y otras moléculas, entre ellas polisacáridos, que han mostrado efecto proapoptótico de células cancerígenas [Müller et al., 2006; Wu et al., 2012].
– Diversos extractos de hongos poseen efecto antiangiogénico, es decir, inhiben la formación de vasos sanguíneos, lo que puede contribuir a comprometer el crecimiento de tumores [Kimura et al., 2004; Nguyen et al., 2015]. También se ha estudiado el efecto antimetastásico de ciertos componentes de los hongos [Kimura et al., 2004].
– Ciertos compuestos de los hongos (polifenoles, polisacáridos, vitaminas, carotenoides, minerales, esteroles, etc.) poseen efecto antioxidante que constituyen un mecanismo de defensa frente al daño oxidativo evitando que un exceso de especies reactivas de oxígeno (ROS) dañen las células (Korzarski et al., 2015). También los extractos de ciertos hongos han mostrado efecto antimutagénico [Notoya-Menoli et al., 2001; Souza-Paccola et al., 2004].
Varios estudios han demostrado la acción antitumoral de diferentes componentes de Ganoderma lucidum (Reishi) (polisacáridos, triterpenos y esteroles) frente a líneas celulares de cáncer [Akihisa et al., 2007; Wu et al., 2001; Kimura et al., 2002; Raj et al., 2015]. También se ha determinado que los efectos antitumoral y antimetastásico de triterpenos de Ganoderma lucidum pueden ser debidos a la inhibición de la angiogénesis inducida por el tumor [Kimura et al., 2002]. Los polisacáridos, especialmente los beta-glucanos han mostrado poseer efecto antitumoral a través de su efecto inmunomodulador y antiangiogénico [Boh et al., 2007]. Estos polisacáridos también poseen efecto antioxidante y reducen el daño celular causado por mutagénicos [Boh et al., 2007]. Estudios demostraron la eficacia del extracto de G. lucidum sobre la inihibición en la formación de colonias, migración celular y formación de esferoides en líneas celulares de cáncer epitelial de ovario (OV2008, C13*, A2780s, A2780-cp), aumentando además de manera significativa el efecto del fármaco quimioterápico cisplatino. G. lucidum también induce la detención del ciclo celular en la fase G2/M e induce la apoptosis mediante la activación de la caspasa 3, aumentando además la expresión del gen p53 e inhibiendo la expresión de la proteína Akt [Zhao et al., 2011]. Otro estudio mostró la eficacia antitumoral de un extracto de G. lucidum sobre la línea celular HO 8910 de cáncer de ovario mediante la regulación a la baja de la expresión del factor de crecimiento endotelial vascular (VEGF) y la regulación al alza de la expresión de la conexina 43 (Cx43) [Dai et al., 2014].
Por otra parte, el Agaricus blazei (Champiñón del sol) es uno de los hongos más potentes para la regulación de la respuesta inmune debido a su contenido en proteoglucanos y β-glucanos que son potentes estimuladores de macrófagos, células NK y neutrófilos [Hetland et al., 2008 y 2011]. Estudios en ratones revelaron que el extracto acuoso de A. blazei aumentó significativamente los niveles de inmunoglobulina G en suero, aumentó el número de células T en el bazo y elevó la capacidad fagocítica en comparación con el grupo control. El consumo de A. blazei se asoció también con un aumento en la velocidad de proliferación de esplenocitos y en la secreción por esplenocitos del factor de necrosis tumoral alfa (TNF-α) [Chang et al., 2007]. También se ha demostrado su eficacia en la mejora de los efectos secundarios asociados a la quimioterapia (falta de apetito, alopecia, inestabilidad emocional, debilidad general, etc.) [Ahn et al., 2004] y en la calidad de vida en pacientes oncológicos en remisión [Ohno et al., 2013]. Además, A. blazei posee una elevada capacidad para frenar la neovascularización de los tumores, representando así una importante estrategia en la terapia antineoplásica [Kimura et al., 2004].
La capacidad antimetastásica del extracto de Grifola frondosa (Maitake) ha sido ampliamente estudiada. Grifola frondosa actúa indirectamente inhibiendo la metástasis mediante su efecto estimulador sobre el sistema inmunitario [Svagelj et al., 2012] así como mediante la inhibición de la adhesión de células tumorales a células endoteliales vasculares [Masuda et al., 2008; Masuda et al., 2013]. Hay estudios que sugieren que G. frondosa tiene la mayor actividad en la inhibición de crecimiento de tumores al administrarse tanto oral como intraperitonealmente [Nanba, 1997]. Además, de manera global, distintos autores afirman que la ingesta de extracto de Maitake también se traduce en una mejora de síntomas en pacientes de cáncer [Ulbricht et al., 2009].
- Ahn WS, Kim DJ, Chae GT, Lee JM, Bae SM, Sin JI, Kim YW, Namkoong SE, Lee IP (2004) Natural killer cell activity and quality of life were improved by consumption of a mushroom extract, Agaricus blazei Murill Kyowa, in gynecological cancer patients undergoing chemotherapy. International Journal of Gynecological Cancer 14, 589-594.
- Akihisa T, Nakamura Y, Tagata M, Tokuda H, Yasukawa K, Uchiyama E, Suzuki T, Kimura Y (2007) Anti-inflammatory and anti-tumor-promoting effects of triterpene acids and sterols from the fungus Ganoderma lucidum. Chemistry & Biodiversity 4, 224-231.
- Boh B, Berovic M, Zhang J, Zhi-Bin L (2007) Ganoderma lucidum and its pharmaceutically active compounds. Biotechnology Annual Review 13, 265-301.
- Chan Y, Chang T, Chan CH, Yeh YC, Chen CW, Shieh B, Li C (2007) Immunomodulatory effects of Agaricus blazei Murill in Balb/cByJ mice. Journal of Microbiology, Immunology and Infection 40, 201-208.
- Chen S, Oh SR, Phung S, Hur G, Ye JJ, Kwok SL, Shrode GE, Belury M, Adams LS, Williams D (2006) Anti-aromatase activity of phytochemicals in white button mushrooms (Agaricus bisporus). Cancer Research 66, 12026-12034.
- Dai S, Liu J, Sun X, Wang N (2014) Ganoderma lucidum inhibits proliferation of human ovarian cancer cells by suppressing VEGF expression and up-regulating the expression of connexin 43. Complementary and Alternative Medicine 14, 434.
- Elbatrawy EN, Ghonimy EA, Alassar MM, Wu FS (2015) Medicinal mushroom extracts possess differential antioxidant activity and cytotoxicity to cancer cells. International Journal of Medicinal Mushrooms 17, 471-479.
- Gao J, Min B, Ahn E, Nakamura N, Lee H, Hattori M (2002) New triterpene aldehydes, lucialdehydes A-C from Ganoderma lucidum & their cytotoxicity against murine & human tumor cells. Chemistry & Pharmacology Bulletin 50, 837-840.
- Hetland G, Johnson E, Lyberg T, Bernardshaw S, Tryggestad AMA, Grinde B (2008) Effects of the medicinal mushroom Agaricus blazei Murill on immunity, infection and cancer. Scandinavian Journal of Immunology 68, 363-370.
- Hetland G, Johnson E, Lyberg T, Kvalheim G (2011) The mushroom Agaricus blazei Murill elicits medicinal effects on tumor, infection, allergy, and inflammation through its modulation of innate immunity and amelioration of Th1/Th2 imbalance and inflammation. Advances in Pharmacological Sciences, Article ID 157015.
- Hirose A, Sato E, Fujii H, Sun B, Nishioka H, Aruoma OI (2007) The influence of active hexose correlated compound (AHCC) on cisplatin-evoked chemotherapeutic and side effects in tumor-bearing mice. Toxicology and Applied Pharmacology 222, 152-158.
- Ina K, Furuta R, Kataoka T, Kayukawa S, Yoshida T, Miwa T, Yamamura Y, Takeuchi Y (2011) Lentinan prolonged survival in patients with gastric cancer receiving S-1-based chemotherapy. World Journal of Clinical Oncology 2, 339-343.
- Kao CHJ, Jesuthasan AC, Bishop KS, Glucina MP, Ferguson LR (2013) Anti-cancer activities of Ganoderma lucidum: active ingredients and pathways. Functional Foods in Health and Disease 3, 48-65.
- Kimura Y, Kido T, Takaku T, Sumiyoshi M, Baba K (2004) Isolation of an anti-angiogenic substance from Agaricus Blazei Murill: its antitumor and antimetastatic actions. Cancer Science 95, 758-764.
- Kimura Y, Taniguchi M, Baba K (2002) Antitumor and antimetastatic effects on liver of triterpenoid fractions of Ganoderma lucidum: mechanism of action and isolation of an active substance. Anticancer Research 22, 3309-3318.
- Klaus A, Kozarski M, Vunduk J, Todorovic N, Jakovljevic D, Zizak Z, Pavlovic V, Levic S, Niksic M, Van Griensven LJLD (2015) Biological potential of extracts of the wild edible Basidiomycete mushroom Grifola frondosa. Food Research International 67, 272-283.
- Kodama N, Komuta K, Nanba H (2002) Can Maitake MD-fraction aid cancer patients? Alternative Medicine Review 7, 236-239.
- Kozarski M, Klaus A, Jakovljevic D, Todorovic N, Vunduk J, Petrović P, Niksic M, Vrvic MM, van Griensven L (2015) Antioxidants of edible mushrooms. Molecules 20, 19489-19525.
- Kubota E, Kataoka H, Hayashi K, Kamiya T, Sasaki M, Ogasawara N, Yamada T, Wada T, Mori Y, Mizoshita T, Shimura T, Mizushima T, Okamoto Y, Ohara H, Joh T (2009) Advanced stomach and pancreas cancer successfully treated with combination chemotherapy with S-1/paclitaxel/lentinan. Hepato-Gastroenterology 56, 106-110.
- Masuda Y, Inoue H, Ohta H, Miyake A, Konishi M, Nanba H (2013) Oral administration of soluble β-glucans extracted from Grifola frondosa induces systemic antitumor immune response and decreases immunosuppression in tumor-bearing mice. International Journal of Cancer 133, 108-119.
- Masuda Y, Murata Y, Hayashi M, Nanba H (2008) Inhibitory effect of MD-Fraction on tumor metastasis: involvement of NK cell activation and suppression of intercellular adhesion molecule (ICAM)-1 expression in lung vascular endothelial cells. Biological and Pharmaceutical Bulletin 31, 1104-1108.
- Mayell M (2001) Maitake extracts and their therapeutic potential – A review. Alternative Medicine Review 6, 48-60.
- Mizuno M, Morimoto M, Minato K, Tsuchida H (1998) Polysaccharides from Agaricus blazei stimulate lymphocyte T-cell subsets in mice. Bioscience, Biotechnology and Biochemistry 62, 434-437.
- Müller CI, Kumagai T, O’Kelly J, Seeram NP, Heber D, Koefflera HP (2006) Ganoderma lucidum causes apoptosis in leukemia, lymphoma and multiple myeloma cells. Leukemia Research 30, 841-848.
- Nanba H (1997) Maitake D-fraction: healing and preventive potential for cancer. Journal of Orthomolecular Medicine 12, 43-49.
- Nguyen VT, Tung NT, Cuong TD, Hung TM, Kim JA, Woo MH, Choi JS , Lee JH , Min BS (2015) Cytotoxic and anti-angiogenic effects of lanostane triterpenoids from Ganoderma lucidum. Phytochemistry Letters 12, 69-74.
- Notoya Menoli RCR, Mantovani MS, Ribeiro LR, Speit G, Jordão BQ (2001) Antimutagenic effects of the mushroom Agaricus blazei Murrill extracts on V79 cells. Mutation Research 496, 5-13.
- Ohno S, Sumiyoshi Y, Hashine K, Shirato A, Kyo S, Inoue M (2013) Quality of life improvements among cancer patients in remission following the consumption of Agaricus blazei Murill mushroom extract. Complementary Therapies in Medicine 21, 460-467.
- Okuno K, Uno K (2011) Efficacy of orally administered Lentinula edodes mycelia extract for advanced gastrointestinal cancer patients undergoing cancer chemotherapy: a pilot study. Asian Pacific Journal of Cancer Prevention 12, 1671-1674.
- Patel S, Goyal A (2012) Recent developments in mushrooms as anti-cancer therapeutics: a review. Biotechnology 2, 1-15.
- Raj PV, Dhanaraj SA, Ali SA, Kuan TH, Mathiyalagan S, Raman S (2015) Anti-proliferative effect of Ganoderma lucidum polysaccharide and triterpenoid fractions against cancer cells. Manipal Journal of Pharmaceutical Sciences 1, 32.
- Rajasekar S, Selvakumar P, Periasamy K, Raaman N (2008) Polysaccharides from Basidiomycetes: A promising source for immunostimulating and anticancerous activity, en Biotechnology: Concepts and Applications Capítulo XII. Narosa Publishing House, p 232-269.
- Souza-Paccola EA, Bomfeti CA, Fávaro LCL, Fonseca ICB, Paccola-Meirelles LD (2004) Antimutagenic action of Lentinula edodes and Agaricus blazei on Aspergillus nidulans conidia. Brazilian Journal of Microbiology 35, 311-315.
- Svagelj M, Berovic M, Gregori A, Wraber B, Simcic S, Boh B (2012) Immunomodulating activities of cultivated Maitake medicinal mushroom Grifola frondosa (Dicks.: Fr.) S.F. Gray (Higher Basidiomycetes) on peripheral blood mononuclear cell. International Journal of Medicinal Mushrooms 14, 377-383.
- Ulbricht C, Weissner W, Basch E, Giese N, Hammerness P, Rusie-Seamon E, Varghese M, Woods J (2009) Maitake mushroom (Grifola frondosa): Systematic review by the natural standard research collaboration. Journal of the Society for Integrative Oncology 7, 66-72.
- Wu B, Cui J, Zhang C, Li Z (2012). A polysaccharide from Agaricus blazei inhibits proliferation and promotes apoptosis of osteosarcoma cells. International Journal of Biological Macromolecules 50, 1116-1120.
- Wu TS, Shi LS, Kuo SC (2001) Cytotoxicity of Ganoderma lucidum triterpenes. Journal of Natural Products 64, 1121-1122.
- Zhao S, Ye G, Fu G, Cheng JX, Yang BB, Peng C (2011) Ganoderma lucidum exerts anti-tumor effects on ovarian cancer cells and enhances their sensitivity to cisplatin. International Journal of Oncology 38, 1319-1327.